Yüksek Duyarlıklı Kardiyak Troponinler ve Toplam Test Süreci
Özet
Güncel Biyokimya Çalışmaları II adlı eserde yer alan bu bölümde, Doç. Dr. Yeşim Güvenç Demirağcı tarafından kardiyovasküler hastalıklar ve akut miyokart enfarktüsü (AMI) tanısında hayati bir role sahip olan yüksek duyarlıklı kardiyak troponinler (hs-cTn) ile toplam test süreci kapsamlı bir biçimde ele alınmaktadır. Çalışma, kas kasılma mekanizmasında temel işlev gören troponin kompleksinin (cTnI, cTnT, cTnC) biyokimyasal yapısını, genetik temellerini, ölçüm yöntemlerini ve analitik duyarlılık seviyelerine göre sınıflandırılmasını detaylarıyla sunmaktadır. Klinik laboratuvarlarda hasta güvenliğini sağlamak ile doğru ve güvenilir sonuçlar elde etmek amacıyla, toplam test sürecini oluşturan pre-analitik, analitik ve post-analitik aşamalar bütüncül bir yaklaşımla incelenmektedir. Bu doğrultuda; örnek türü, pıhtılaşma koşulları, stabilite, hemoliz, yüksek doz biyotin alımı, heterofil ve anti-cTn antikorları, makro-troponin ile tekrarlanamayan aykırı değerler gibi troponin analizlerini etkileyen interferans faktörleri ve bunlara yönelik çözüm önerileri açıklanmaktadır. Ayrıca troponin testlerinin standardizasyonu, 99. yüzdelik üst referans limiti, analitik kalitenin optimizasyonu, ideal sonuç verme süresi (TAT ≤ 60 dk), ölçüm birimleri (ng/L) ve delta (değişim) takibinin AMI tanı algoritmalarındaki kritik yeri vurgulanmaktadır. Son olarak, bilişim teknolojilerinin entegrasyonu ve klinik-laboratuvar iş birliğinin test süreçlerinin iyileştirilmesindeki rolü ortaya konmaktadır.
Referanslar
Roger VL, Go AS, Lloyd-Jones DM, et al. Heart disease and stroke statistics–2012 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 2012; 125: e2-220. doi: 10.1161/CIR.0b013e3182009701.
Thygesen K, Alpert JS, Jaffe AS, et al. Fourth Universal Definition of Myocardial Infarction. Circulation. 2018;138(20):e618-e651. doi: 10.1161/CIR.0000000000000617.
Garg P, Morris P, Fazlanie AL, et al. Cardiac biomarkers of acute coronary syndrome: from history to high-sensitivity cardiac troponin. Intern Emerg Med. 2017; 12:147–155.
Jarolim P. High sensitivity cardiac troponin assays in the clinical laboratories. Clin Chem Lab Med. 2015; 53(5): 635–652.
Krintus M, Panteghini M. Laboratory-related issues in the measurement of cardiac troponins with highly sensitive assays. Clin Chem Lab Med. 2020; 58(11): 1773–1783.
Kozinski M, Krintus M, Kubica J, et al. High-sensitivity cardiac troponin assays: From improved analytical performance to enhanced risk stratification. Crit Rev Clin Lab Sci. 2017;54(3): 143–172.
Lundberg GD. How clinicians should use the diagnostic laboratory in a changing medical world. Clin Chim Acta. 1999; 280:3–11.
Hawkins R. Managing the pre- and post-analytical phases of the total testing process. Ann Lab Med. 2012; 32(1): 5–16.
Herman DS, Kavsak PA. Variability and error in cardiac troponin testing. Am J Clin Pathol. 2017; 148:281-295 281.
Luksic AH, Gabaj NN, Miler M, et al. Visual assessment of hemolysis affects patient safety. Clin Chem Lab Med. 2018; 56:574–81.
Cadamuro J, Lippi G, von Meyer A, et al. European survey on preanalytical sample handling – Part 2: Practices of European laboratories on monitoring and processing haemolytic, icteric and lipemic samples. On behalf of the European Federation of Clinical Chemistry and Laboratory Medicine (EFLM) Working Group for the Preanalytical Phase (WG-PRE). Biochem Med (Zagreb). 2019; 29:020705.
Bais R. The effect of sample hemolysis on cardiac troponin I and T assays. Clin Chem. 2010; 56: 1357-9.
Frame IJ, Joshi PH, Mwangi C, et al. Susceptibility of cardiac troponin assays to biotin interference. Am J Clin Pathol. 2019; 151:486-493
Bowena R, Benavidesb R, Colón-Francoc JM, et al. Best practices in mitigating the risk of biotin interference with laboratory testing. Clin Biochem. 2019; 74: 1–11.
Willeman T, Casez O, Faure P, et al. Evaluation of biotin interference on immunoassays: new data for troponin I, digoxin, NT-Pro-BNP, and progesterone. Clin Chem Lab Med. 2017;
28;55(10): e226-e229. doi: 10.1515/cclm-2016-0980.
Saenger AK, Jaffe AS, Body R, et al. Cardiac troponin and natriuretic peptide analytical interferences from hemolysis and biotin: educational aids from the IFCC Committee on Cardiac Biomarkers (IFCC C-CB). Clin Chem Lab Med. 2019; 24;57(5):633-640. doi: 10.1515/cclm2018-0905.
Lippi G, Aloe R, Meschi T, et al. Interference from heterophilic antibodies in troponin testing. Case report and systematic review of the literature. Clin Chim Acta. 2013; 426: 79-84).
Jaffe AS. Troponin-past, present, and future. Curr Probl Cardiol. 2012; 37:209-28.
Fleming SM, O’Byrne L, Finn J, et al. False-positive cardiac troponin I in a routine clinical population. Am J Cardiol. 2002; 89: 1212-5.
Savukoski T, Ilva T, Lund J, et al. Autoantibody prevalence with an improved immunoassay for detecting cardiac troponin-specific autoantibodies. Clin Chem Lab Med. 2014; 52:273-279.
Favresse J, Bayart JL, Gruson D, et al. The underestimated issue of non-reproducible cardiac troponin I and T results: case series and systematic review of the literatüre. Clin Chem Lab Med. 2021; 12;59(7):1201-1211. doi: 10.1515/cclm-2020-1564.
Apple FS, Jaffe AS, Collinson P, et al. IFCC educational materials on selected analytical and clinical applications of high-sensitivity cardiac troponin assays. Clin Biochem. 2015; 48:201-203.
Apple FS. A new season for cardiac troponin assays: it’s time to keep a scorecard. Clin Chem. 2009; 55:1303-1306.
de Lemos JA, Drazner MH, Omland T, et al. Association of troponin T detected with a highly sensitive assay and cardiac structure and mortality risk in the general population. JAMA. 2010; 304:2503-2512.
Ungerer JP, Tate JR, Pretorius CJ. Discordance with 3 cardiac troponin I and T assays: implications for the 99th percentile cutoff. Clin Chem. 2016; 62:1106-1114.
