Klinik Laboratuvarda Yasaklı ve Kötüye Kullanılan Madde Analizi
Özet
"Güncel Biyokimya Çalışmaları II" başlıklı eserin "Klinik Laboratuvarda Yasaklı ve Kötüye Kullanılan Madde Analizi" isimli 9. bölümünde, psikoaktif maddelerin ve metabolitlerinin klinik ile adli ortamlarda tespit edilmesine yönelik laboratuvar süreçleri kapsayıcı bir biçimde ele alınmaktadır. Çalışmada; tıbbi aciliyetler, travma vakaları, miyokart infarktüsü şüphesi, aşırı doz durumları ve gebelik komplikasyonları gibi biyokimyasal analize gereksinim duyulan temel alanlar açıklanmakta; kan, ter, tükürük, saç ve idrar gibi biyolojik matrikslerin avantajları ile sınırlılıkları ayrıntılı olarak karşılaştırılmaktadır. Kan örneği akut kullanımı tanımlamada öne çıkarken, saç analizi uzun süreli geçmiş maruziyeti göstermekte; ter ve tükürük ise pratik toplama olanağı sağlamakla birlikte düşük analit konsantrasyonu ve dar saptama aralığı nedeniyle ikincil kalmaktadır. Örnek alımının invaziv olmaması, maddelerin yüksek konsantrasyonda bulunması ve kolay muhafaza edilebilmesi bakımından idrarın taramada en çok tercih edilen matriks olduğu vurgulanmaktadır. İdrar numunelerindeki olası seyreltme, değiştirme ve ikame manipülasyonlarını engellemek adına uygulanan sıcaklık, pH, kreatinin ve özgül ağırlık gibi fiziksel denetim testleri detaylandırılmaktadır. Analitik tekniklerde immünokimyasal tarama yöntemlerinin ilk adım olarak kullanıldığı, çapraz reaktiviteden kaynaklı hatalı pozitiflik riskini ortadan kaldırmak amacıyla GC-MS ve LC-MS/MS gibi kromatografik-kütle spektrometrik yöntemlerle doğrulama yapılmasının gerekliliği belirtilmektedir. Eser, analitik bulguların doğru klinik ve adli yorumlanmasının hayati önemini göstererek alanındaki profesyoneller için rehber niteliğinde bir tanıtım sunmaktadır.
Referanslar
Lum G, Mushlin B. Urine Drug Testing: Approaches to screening and confirmation testing. Lab Med. 2004;35(6):368–73.
Wolff K, Farrell M, Marsden J, Monteiro MG, Ali R, Welch S, et al. A review of biological indicators of illicit drug use, practical considerations and clinical usefulness. Addiction. 1999;94(9):1279–98.
Hammett-Stabler CA, Pesce AJ, Cannon DJ. Urine drug screening in the medical setting. Clin Chim Acta. 2002;315(1–2):125–35.
Wolff K, Welch S, Strang J. Specific laboratory investigations assessments and management drug problems for of. 1999;5:180–91.
Warner EA, Walker RM, Friedmann PD. Should informed consent be required for laboratory testing for drugs of abuse in medical settings? Am J Med. 2003;115(1):54–8.
Yedekci A, Onur E. Bağımlılık Yapıcı İlaçlar ve Tayin Yöntemleri. 2010;8(3):125–31.
Moffat, A. C., Jackson, J. V., Moss, M. S. et al. Isolation and Identification of Drugs. Pharm Press. 1986;963.
Huestis MA, Oyler JM, Cone EJ, Wstadik AT, Schoendorfer D, Joseph RE. Sweat testing for cocaine, codeine and metabolites by gas chromatography-mass spectrometry. J Chromatogr B Biomed Sci Appl. 1999;733(1–2):247–64.
Fucci N, De Giovanni N, Scarlata S. Sweat testing in addicts under methadone treatment: An Italian experience. Forensic Sci Int. 2008;174(2–3):107–10.
Dolan K, Rouen D, Kimber J. An overview of the use of urine, hair, sweat and saliva to detect drug use. Drug Alcohol Rev. 2004;23(2):213–7.
Burns M, Baselt RC. Monitoring drug use with a sweat patch: An experiment with cocaine. J Anal Toxicol. 1995;19(1):41–8.
Fucci N, De Giovanni N, Pascali VL. The sweat matrix: A new perspective for drugs analysis. Ski Res Technol. 2015;21(1):129–30.
Hawks RL, Chiang CN. Urine Testing for Drugs of Abuse. Department of Health and Human Sciences. 1986.
Kidwell DA, Holland JC, Athanaselis S. Testing for drugs of abuse in saliva and sweat. J Chromatogr B Biomed Appl. 1998;713(1):111–35.
Pragst F, Balikova MA. State of the art in hair analysis for detection of drug and alcohol abuse. Clin Chim Acta. 2006;370(1–2):17–49.
Nakahara Y, Takahashi K, Kıkura R. Hair Analysis for Drugs of Abuse. X. Effect of physicochemical properties of drugs on the incorporation rates into hair. Biol Pharm Bull [Internet]. 1995;18(9):1223–7. Available from: https://www.jstage.jst.go.jp/article/bpb1993/17/11/17_11_1460/_pdf/-char/ja
Medical Review Officer Manual for Federal Wrokplace Drug Testing Programs. Department of Health and Human Resources. 2017.
Poklis A, Jortani S, Edinboro LE, Saady JJ. Direct determination of benzoylecgonine in serum by EMIT® D.A.U. Cocaine metabolite immunoassay. J Anal Toxicol. 1994;18(7):419–22.
Berg T, Lundanes E, Christophersen AS, Strand DH. Determination of opiates and cocaine in urine by high pH mobile phase reversed phase UPLC-MS/MS. J Chromatogr B Anal Technol Biomed Life Sci. 2009;877(4):421–32.
Codyt J, Schwarzhooff R. Interpretation of methamphetamine and amphetamine enantiomer data J Anal Toxicol. 1993;17(6):321–6.
Nilsson M, Widerlrv E, Meresaar U. Effect of urinary pH on the disposition of methadone in man. 1982;337–42.
